مقايسه كاربرد تؤام جداسازي ايميونومگنتيك و كروم آگار سالمونلا با كشت متداول براي جداسازي و تشخيص سريع سالمونلا در نمونههاي اسهالي گاو

تكنيكها و محيطهاي كشت متنوعي براي تشخيص سريع سرووارهاي سالمونلا توسعه يافته است. با اين همه هنوز مشكلات حساسيت و ويژگيهاي آنها پابرجا است. به منظور كاهش زمان اخذ نتيجه و به حداقل رساندن مشكلات مرتبط با روشهاي سريع نظير تداخل بقاياي مواد غذايي و ميكروفلوراي مدفوع و نيز فقدان حساسيت، توجه زيادي به توسعه روشهاي جداسازي و تغليظ ارگانيسمهاي بيماريزا قبل از تشخيص معطوف گشته است. روشهاي متنوعي نظير فيلتراسيون، سانتريفيوژ و بيوسوربنتهاي لكتيني استفاده شده است، ليكن موفقترين روش براي اين منظور روش ايميونومگنتيك بوده است. اين بررسي با هدف مقايسه روش كشت متداول جهت شناسايي سالمونلا در نمونه هاي اسهالي گاو با روش تؤام ايميونومگنتيك و محيط كروم آگار سالمونلا (IMS 4 ) انجام گرفت. از CAS IMS نمونه اسهالي كه با هر دو روش كشت متداول ميكروبي و 00 مورد آزمايش قرار گرفت، CAS IMS درصد) براي سالمونلا مثبت بودند. روش 8/25 نمونه ( 33 نتايج بهتر و پرگنههاي مثبت كاذب كمتري نشان داد. CAS IMS حساسيت هر دو روش كشت متداول ميكروبي و IMS درصد بود. ويژگي روش 100 CAS درصد) بطور 99/73( CAS درصد) بود. نتايج نشان داد كه استفاده از تكنيك ايميونومگنتيك و 94/55معني داري بالاتر از روش كشت متداول ميكروبي ( كشت آن بر روي محيط كروم آگار سالمونلا درجه بالايي از حساسيت و ويژگي نشان داده و زمان تشخيص سالمونلا را كاهش و در نتيجه كاهش هزينهها مي شود. روش ايميونومگنتيك براي جداسازي اوليه سالمونلاها در نمونه هاي مدفوعي توصيه مي شود.

Various techniques and culture media were developed for rapid identification of Salmonella serovars. However, there are still problems with their sensitivity and specificity. In an attempt to reduce the time spent to obtain a result and to minimize the problems associated with rapid detection systems such as interference from food ingredients debris, micro flora in feces, and lack of sensitivity, there has been a lot of interest in the development of separation and concentration techniques prior to detection of pathogenic organisms. Various techniques have been utilized for this purpose including: filtration, centrifugation, and lectinbased biosorbents. However, the most successful of the approaches for separation and concentration of target organisms has been the use of Immunomagnetic Separation (IMS). This study was conducted with the objective of comparing the conventional microbiological methods to detect salmonella in diarrheic samples with Immunomagnetic separation combined with chromagar salmonellae medium (IMSCAS). Of the 400 fecal samples tested by the conventional microbiological and IMSCAS methods, 33 (8.25%) was culture positive for Salmonella serotypes. The IMSCAS method gave better results than the conventional microbiological method with less falsepositive colonies. Sensitivities for the conventional microbiological method and the IMSCAS were 100%. The specificity of the IMSCAS method (99.73%) was significantly higher than that of the conventional microbiological method (94.55%). The use of plating IMS on CAS medium demonstrated high levels of sensitivity and specificity and reduced the time to final identification of Salmonella spp., resulting in substantial cost savings. It can be recommended for the primary isolation of Salmonella spp. from stool specimens.