پديد آورندگان :
اسدي، ابوذر دانشگاه رازي كرمانشاه، پرديس كشاورزي و منابع طبيعي - دانشكده علوم و مهندسي كشاورزي - گروه مهندسي توليد و ژنتيك گياهي , زبرجدي، عليرضا دانشگاه رازي كرمانشاه، پرديس كشاورزي و منابع طبيعي - دانشكده علوم و مهندسي كشاورزي - گروه مهندسي توليد و ژنتيك گياهي , عبدالهي، محمدرضا دانشگاه بوعلي همدان - دانشكده كشاورزي - گروه زراعت و اصلاح نباتات
چكيده فارسي :
توليد لاينهاي خالص يكي از مهم‌ترين ابزارها جهت توليد بذر پر عملكرد مي‌باشد. با توجه به پيشرفت‌هاي اخير روش‌هاي آزمايشگاهي مي‌توان لاينهاي خالص را در زمان كوتاهي توليد كرد. در مطالعه حاضر، به منظور توليد لاينهاي خالص از طريق كشت تخمك آزمايش فاكتوريلي در قالب طرح كاملاً تصادفي با سه تكرار در گلخانه و آزمايشگاه پرديس كشاورزي و منابع طبيعي دانشگاه رازي كرمانشاه در طي سالهاي 96-1394 اجرا شد. فاكتورها شامل سطوح مختلف تنظيمكننده رشد گياهي و دو ژنوتيپ خيار اصفهاني و بيت‌آلفا بودند. تخمك‌ها يك روز قبل از گرده‌افشاني برداشت شدند و بر روي محيط MS تكميل‌شده با غلظت‌هاي مختلف TDZ (0/01، 0/02، 0/03، 0/04، 0/05، 0/06، 0/07 و 0/08 ميليگرم بر ليتر) كشت شدند. پيش تيمار گرمايي 33 درجه سانتي‌گراد به مدت 3 روز روي كشت‌ها اعمال شد. تعداد جنين‌هاي كه به‌طور مستقيم القاء شدند شمارش شد. طبق نتايج حاصل از مقايسه ميانگين مشخص شد كه با افزايش غلظت تنظيمكننده رشد گياهي TDZ در محيط القاء جنين نيز افزايش يافت و در غلظت 0/08 ميليگرم بر ليتر بيشترين ميانگين تعداد جنين در هر دو ژنوتيپ مورد آزمايش به دست آمد. بر اين اساس بيشترين ميانگين تعداد جنين براي ژنوتيپ اصفهاني 23/33 و براي ژنوتيپ بيت‌آلفا 20/66 در محيط 0/08 ميليگرم بر ليتر به دست آمد و كمترين ميانگين تعداد جنين نيز در محيط 0/01 ميليگرم بر ليتر براي هر دو ژنوتيپ مورد بررسي به دست آمد. سطوح پلوئيدي بافت‌هاي توليد شده با فلوسايتومتري مشخص شد و بافت‌هاي هاپلوئيد به محيط باززايي منتقل شدند. در نهايت گياهان باززايي شده دابلد هاپلوئيد شدند و مي‌توان آن‌ها را به‌عنوان لاين خالص در برنامه‌هاي اصلاحي بكار گرفت.
چكيده لاتين :
Background and Objectives
Production of pure lines is one of the most important tools due to production of high-yield seeds. Pure lines can be produced in a short time using in vitro techniques and therefore, reduce several years in required time for conventional plant breeding programs. The purpose of this study was investigation of different concentrations of TDZ on production of haploid plants in cucumber ovule culture.
Materials and Methods
The experimental layout was conducted in factorial arrangement in randomized complete design with three replications in greenhouse and laboratory of Razi university during 2015-2017. Factors were two cucumber genotypes (Esfahani and Beit Alfa) and different concentrations of TDZ (0, 0.01, 0.02, 0.03, 0.04, 0.05, 0.06, 0.07, 0.08 mg/l). Unfertilized ovaries were harvested 1 day before an thesis and they were sliced into 1 mm cross sections under sterile conditions and placed on solid MS medium. Immediately after placing the unfertilized ovary slices of each genotype on induction medium, they were exposed to a thermal shock pretreatment at 35±1°C for 3 days. The first visual structures formed after 3 days in culture. After two weeks of culture, the frequency of embryo formation was recorded. After embryogenesis, the embryos were sub-cultured in medium containing 1.5 mg/L-1 GA3 and finally cultured in medium containing 0.05 mg/L-1 NAA and 1.5 mg/L-1 BAP for organogenesis.
Results
Results indicated a statistically significant effect at 1% among TDZ concentrations. Genotypes and interaction between genotype and TDZ concentration did not have a significant effect on embryo induction. According to the results of means comparison, M8 medium with the average of 23.33 for Esfahani genotype and 20.66 for Beta Alfa genotype had the highest embryo induction and M1 showed the lowest embryo induction for both genotypes. Ploidy level of calli and embryos were identified by Flucytometry assay. Haploid embryos were transferred to the regenerative medium. The chromosome content of haploid plants was doubled spontaneously in all regenerated plants. Double haploid plants originated from megaspore and they were equivalent to haploid, which relates to homozygosity and can be used directly in breeding program.
Discussion
The high number of embryos was obtained in high concentration of TDZ (0.08 mg/l). Flucytometry assay is a way to recognizing ploidy level in plant tissues; thus it could be useful in choosing haploid tissue. Spontaneous chromosome doubling may occur via somatic cell fusion, endoreduplication, endomitosis and possibly many other mechanisms. In conclusion, the higher rates of embryo formation frequency achieved and doubled haploids obtained in the present study are promising for future work.
