عنوان مقاله :
نقش مهاري آنزيم فورمات دهيدروژناز در رشد باكتري صنعتي BL21
عنوان به زبان ديگر :
Inhibitory role of formate dehydrogenase enzyme in the growth of BL21 industrial bacteria
پديد آورندگان :
رضوي پور، رويا دانشگاه آزاد اسلامي واحد علوم وتحقيقات تهران - دانشكده علوم پايه - گروه ميكروبيولوژي، تهران، ايران , اخوان سپهي، عباس دانشگاه آزاد اسلامي واحد تهران شمال - دانشكده علوم زيستي - گروه ميكروبيولوژي، تهران، ايران , مدرسي، محمد حسين دانشگاه تهران - دانشكده علوم پزشكي - گروه ژنتيك پزشكي، تهران، ايران , بمبئي، بيژن پژوهشگاه ملي مهندسي ژنتيك و زيست فناوري - گروه زيست فناوري سامانه ها، تهران، ايران
كليدواژه :
اشرشياكلي , مسير متابوليكي , فورمات دهيدروژناز , افزايش ضريب رشد
چكيده فارسي :
سابقه و هدف: متابوليسم بالا در حضور اكسيژن با سرعت رشد سريع در طيف وسيعي از ارگانيسمها از جمله باكتريها، مخمرها و يا سلولهاي سرطاني رخ ميدهد. توانايي رشد با راندمان بالا نقش مهمي در بيوتكنولوژي بهويژه در طي فرآيند توليد پروتئينها (بهطور ترجيحي نوتركيب) و يا تركيبهاي متابوليك مانند اسيدهاي آلي و متابليت هاي ثانويه ايفا ميكند. افزايش راندمان رشد باكتريها به ويژه باكتري اشرشياكلي كه موتور فعاليتهاي تحقيقاتي و صنعتي است هدف آرماني در بيوتكنولوژي ميكربي است. در اين تحقيق بر آن شديم تا با بررسي مسيرهاي متابوليكي E. coli راهكاري براي كاهش ميزان CO2 توليدي و در نتيجه افزايش راندمان توليد توده سلولي از مواد آلي در فرآيند رشد و تكثير پيدا كنيم.
مواد و روش-ها: مسيرهاي متابوليكي مستند شده در وبگاه KEGG با ديدگاه كاهش راندمان توليد CO2 از اسيد فرميك بررسي شد. دو سويه باكتري ناك اوت شده با منشاء K12 از بانك ميكروبي Keio تهيه شد. سپس، سويه هاي منتخب در محيط كمپلكس (LB) و ساده (M9+Glycerol) كشت داده شدند. ميزان توليد توده سلولي در تيمارهاي مختلف با اندازهگيري جذب نوري در 600 نانومتر با يكديگر و همچنين با سويه استاندار BL21 مقايسه شدند.
نتايج: در محيط پيچيده LB، موتان باكتريهاي اشرشيا (W3866 و W4040.) نسبتبه BL21 از رشد بيشتري (در حدود 5 برابر درساعات 8 و 10 ساعته و 3 برابري در زمان 12 ساعته نسبتبه نمونه هاي داراي ژن فورمات دهيدروژناز) برخوردارند. البته اين تفاوت در محيط ساده M9 بارزتر بود به طوريكه رشد بيش از 6 برابري در زمان 24ساعت از انكوباسيون در نمونههاي موتان فاقد ژن فورمات دهيدروژناز نسبتبه سويه مادر BL21 مشاهده نموديم.
بحث: آزمايشها با پيشبينيهاي متابوليكي بهطور كامل مطابقت داشت و رشد باكتريهاي موتان از باكتري BL21 بيشتر بود. نكته جالب توجه رشد بيشتر موتانها در محيط ساده حاوي گليسرول بود كه نشان داد گليسرول منبع بهطور كامل مناسبي براي رشد باكتري اشرشياكلي است. اين نتايج دلايل عدم تطابق پيش بيني هاي مدلهاي متابوليكي قبلي كه گليسرول را يك منبع كربن مناسب براي رشد E. coli اعلام كرده بود، ولي در عمل به آن دست نمي يافت، را توضيح ميدهد.
نتيجه گيري: در شرايط فيزيولوژيكي نرمال E. coli قادر به رشد بالايي در محيط گليسرول نيست، حذف ژن فورمات دهيدروژناز در آن سبب تغييرهاي اساسي در روند متابوليسمي و افزايش چند برابري رشد در مقايسه با سويه بياني BL21 گرديد كه بيانگر نقش اين آنزيم در جلوگيري از افزايش راندمان رشد E. coli در حضور گليسرول است. به علاوه از سويه حاصل ميتوان در بيان پروتئينهاي نوتركيب با راندمان بالاتر استفاده نمود.
چكيده لاتين :
Aim and Background: High metabolism occurs in the presence of oxygen with rapid growth rate in a
wide range of organisms including bacteria, yeasts or cancer cells. The ability to grow at high yields plays
an important role in biotechnology, especially during the production of proteins (preferably recombinant)
or metabolic compounds such as organic acids and secondary metabolites. Increasing the growth
efficiency of bacteria, especially Escherichia coli, which is the engine of research and industrial activities,
is a noble goal in microbial biotechnology. In this study, we sought to find a solution to reduce the
amount of CO2 produced and thus increase the production efficiency of cell mass from organic matter in
the process of growth and proliferation by examining the metabolic pathways of E. coli.
Materials and Methods: Metabolic pathways documented on the KEGG site were examined with a
view to reducing the CO2 production efficiency of formic acid. Two strains of knockout bacteria of K12
origin were obtained from Keio microbial bank. Then, selected strains were cultured in complex (LB) and
simple (M9 + Glycerol) media. Cell mass production in different treatments were compared with the
standard BL21 strain based on optical absorption at 600 nm.
Results: In the LB complex medium, Escherichia coli mutants (W3866 and W4040) grew faster than
BL21 (approximately 5-fold at 8 and 10 h and 3 times at 12 h compared to samples with the
dehydrogenase formate gene). However, this difference was more pronounced in the simple M9 medium,
as we observed more than 6-fold growth in 24 hours of incubation in mutant samples lacking the FDH
gene compared to the BL21 maternal strain.
Discussion: The experiments were completely in line with metabolic predictions and the growth of
mutant bacteria was higher than that of BL21. Interestingly, most mutants grew in a simple medium
containing glycerol, which showed that glycerol is a very good source for the growth of Escherichia coli
bacteria. These results explain the inconsistency of predictions of previous metabolic models that
declared glycerol a suitable carbon source for the growth of E. coli, but did not achieve it in practice.
Conclusion: Under normal physiological conditions, E. coli is not able to grow high in glycerol
medium. Deletion of formate dehydrogenase gene caused fundamental changes in metabolic process and
increased growth rate compared to BL21 strain, which indicates the inhibitory role of this enzyme in
increased growth efficiency of E. coli in the presence of glycerol. In addition, the resulting strain can be
used to express recombinant proteins with higher efficiency.
عنوان نشريه :
تازه هاي بيوتكنولوژي سلولي مولكولي