اثر عصاره ي گياه سرخارگل (Echinacea purpurea) بر عملكرد و پاسخ هاي ايمني سلولي و هومورال جوجه هاي گوشتي در شرايط تضعيف سيستم ايمني

Effect of purple coneflower (Echinacea purpurea) extract on the performance and cellular and humoral immune responses of broilers under immunosuppressive condition

در اين تحقيق اثر عصاره ي سرخارگل بر عملكرد و پاسخ هاي ايمني در شرايط سركوب ايمني با استفاده از 240 قطعه جوجه ي گوشتي بررسي شد. عصاره به مقدار صفر (E0)، 1 (E1) و 5/2 (E2.5) ميلي ليتر در ليتر از روز 6 تا 42 به صورت مستمر به آب آشاميدني اضافه گرديد. در روزهاي 14، 15، 16، 34، 36، 38 و 40 به نيمي از جوجه ها در هر سطح عصاره ي سرخارگل براي سركوب ايمني، سيكلوسپورين به مقدار mg/kg 9/9 (C+) خورانده شد و نيمي از جوجه ها هيچ درماني (C-) دريافت نكردند. تيمارهاي آزمايش شامل E0C-،E0C+ ، E1C-، E1C+، E2.5C- و E2.5C+ بودند. براي ارزيابي پاسخ هاي ايمني سلولي در روز 16، مقدار 1/0 ميلي ليتر محلول فيتوهماگلوتينين (mg/ml 2/0) به صورت داخل پوستي (چين پوستي بال) تزريق شد و ضخامت پوست بعد از 24 و 48 ساعت اندازه گيري گرديد. محلول 25% گلبول قرمز گوسفند (SRBC) در روز 33 به صورت عضلاني تزريق شد و عيار پادتن IgG و IgM ضد SRBC از طريق آزمايش هماگلوتيناسيون در روزهاي 34، 36، 38 و 40 تعيين گرديد. ضريب تبديل خوراك در مقدار ml1 عصاره ي سرخارگل (49/1) كم تر از مقدار آن در شاهد (62/1) بود (05/0P < ). عيار پادتن كل و IgG در روزهاي 39 و 42 و پاسخ هاي ايمني سلولي در تيمار E2.5C+ بيش تر از تيمار E0C+ و E1C+ و كم تر از تيمار E1C- و E2.5C- بود (05/0P < ). نتيجه نهايي اين كه، افزودن 5/2 ميلي ليتر عصاره ي سرخارگل در هر ليتر آب آشاميدني جوجه هاي گوشتي، سبب تحريك پاسخ هاي ايمني سلولي و هومورال در شرايط سركوب ايمني مي شود.

The experiment was conducted by using of 240 chicks to determine the effect of purple coneflower extract on the performance and immune responses under immunosuppressive condition. The extract of purple coneflower was added in the levels of 0 (E0), 1 (E1) and 2.5 ml (E2.5) to drinking water from 6 to 42 d. At 14, 15, 16, 34, 36, 38 and 40 d in each level of purple coneflower, half of chicks were treated by 9.9 mg/kg oral cyclosporine (C+) and other chicks were not treated (C-). The treatments were E0C-, E0C+, E1C-, E1C+, E2.5C-, E2.5C+. Cellular immune responses were assayed by injection of 0.1 ml Phytohaemagglutinin-P (PHA-P) (0.2 mg/ml) in the skin fold of wings at 16 d and thickness of skin were measured after 24 and 48h. To investigate humoral immune responses a 25% SRBC suspension (0.1 ml) were injected in the breast muscle at 33 d and titers IgG and IgM anti SRBC was determined by haemagglutination test at 34, 36, 38 and 40 d. Results indicated that the feed conversion ratio was lower for 1 ml (1.49) purple coneflower than control (1.62) purple coneflower (P < 0.05). Total and IgG titer against SRBC at 39 and 42 d and also cellular immune responses was higher in E2.5C+ than E0C+ and E1C+ but it was lower than E1C- and E2.5C- (P < 0.05). Therefore, adding 2.5ml/l purple coneflower extract to drinking water improve cellular and humoral immune responses under immunosuppressive condition.